藻類へのエレクトロポレーションによる遺伝子導入

クラミドモナスは、バイオ燃料生産を含む多くの生物学的知見を研究するために広く用いられている真核単細胞緑藻である。

本研究では、矩形波電気パルスを利用したエレクトロポレーションにより、細胞壁を除去せずに野生型クラミドモナス株を迅速に形質転換する方法を確立した。 電気的条件の最適化により、工業的に有用な他の藻類の形質転換にも適用することができると期待される。

1. NEPA21によりaphVIIカセット（ハイグロマイシンに対して耐性を付与するDNA断片）をクラミドモナス野生株に導入し、30 µg mL-1のハイグロマイシンBを含むTAP寒天培地に撒いた時の形質転換株のコロニー。
2. NEPA21によりpTT1-LciB-GFPを導入して得られた形質転換株のLCIB-GFP由来の蛍光像。 はっきりとしたリング状の蛍光シグナルがピレノイド構造の周辺に観察される。スケールバー：5 µm

以前までの方法では、形質転換前にガメトライシンを調整するのに数日の時間が必要であった。 それに比べて、この方法を使えば、前準備なくDNAを直接野生株に導入することが可能である。 また、パルスの電気条件を検討することにより、クラミドモナス以外の有用な微細藻類の形質転換に利用することも可能であると考えられる。

京都大学大学院生命科学研究科　微生物細胞機構学分野　山野隆志先生・井口ひろ先生・福澤秀哉先生
※Journal of Bioscience and Bioengineering, Volume 115, Issue 6, Pages 691-694, June 2013　参考

多重連続パルスによって外来DNAを細胞に導入する電気穿孔法を用いた羽状目珪藻フェオダクチラム（Phaeodactylum tricornutum）の高効率的な形質転換法を確立した。 エレクトロポレーターNEPA21のパルス条件を最適化することにより、珪藻の強固な珪酸質の被殻を除去することなく高い形質転換効率（10×⁸細胞あたり～4,500細胞の形質転換）を達成した。

これは、パーティクルガン法と今回と同じpPha-T1ベクターを用いた従来のフェオダクチラム形質転換方法に比べ10～100倍高い形質転換効率である。 この方法のさらなる利点はゼオシン耐性のコロニーを得るまでの期間が短いことである。 パーティクルガン法ではゼオシン耐性コロニーを得るまでにおよそ3～4週間かかるが、我々の方法では、電気パルス後10～15日でコロニーが得られる。 これは、珪藻細胞に対するダメージが小さく細胞壁を無傷で保つためである可能性が考えられる。

1. 形質転換したフェオダクチラムのゲノムDNA 中のsgfp遺伝子, uidA遺伝子, actin遺伝子をPCR で増幅した。 野生型（wt）と4 つのゼオシン耐性珪藻ライン（G1-G4 = sgfp形質転換体、及び、U1-U4 = uidA形質転換体）から単離したゲノムDNA をPCR の鋳型に用いた。
2. フェオダクチラムの顕微鏡写真。sGFP（S65T）タンパク質の存在が明るい緑色蛍光により示された。
3. 明視野でのsGFP（S65T）を発現しているフェオダクチラム
4. 明視野でのGUSを発現しているフェオダクチラム細胞の顕微鏡写真。GUS活性が青色染色によって検出されている。スケールバー：10μm
5. sGFP を発現している形質転換フェオダクチラム細胞のラインごとの蛍光強度比較。それぞれの形質転換ラインの相対的な蛍光強度はImage Jにより評価した。値：5～6細胞の平均値±標準偏差

ゼオシン耐性コロニーのうち、約90％がレポーター遺伝子を発現しており、継代を繰り返してもレポーター遺伝子の発現は安定に維持されていることが確認された。

京都大学　生命科学研究科　伊福健太郎先生、兵庫県立大学　生命理学研究科　菓子野康浩先生　提供
※Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, Volume 77, Number 4, Pages 874-876, April 2013　参考